background image

 

© 2009

 

page 1 of 4 

Equine  

Infectious Anemia 

Swamp Fever,  

Mountain Fever,  

Slow Fever,  

Equine Malarial Fever, 

 Coggins Disease 

 

Last Updated: August 2009 

 

 
 

 

 

Importance 

Equine  infectious  anemia  (EIA)  is  a  retroviral  disease  of  equids  that  may  be 

characterized by acute and/or chronic recurring clinical signs including fever, anemia, 
edema and cachexia in some animals. Many horses have very mild or inapparent signs 
on first exposure, and carry this virus subclinically. The owners of these animals are 
unlikely to realize that they are infected unless serological testing is done. All infected 
horses, including those that are asymptomatic, become carriers and are infectious for 
life.  Infected  animals  must  either  be  destroyed  or  remain  permanently  isolated  from 
other equids to prevent transmission. 

Etiology 

Equine infectious anemia is caused by equine infectious anemia virus (EIAV), a 

lentivirus in the family Retroviridae (subfamily Orthoretrovirinae).  

Species Affected 

Equine infectious anemia virus is reported to infect all members of the Equidae. 

Clinical  cases  occur  in  horses  and  ponies  (Equus  caballus),  and  have  also  been 
reported  in  mules.  Some  horse-adapted  viral  isolates  replicate  to  low  levels  without 
clinical  signs  in  donkeys  (E.  asinus);  however,  unpublished  evidence  suggests  that 
serially-passaged, donkey-adapted isolates may be pathogenic for this species.  

Geographic Distribution 

Equine infectious anemia has been found nearly worldwide. This disease appears 

to be absent from a few countries including Iceland and Japan.  

Transmission 

Equine infectious anemia virus is transmitted mechanically on the mouthparts of 

biting  insects.  In  horses,  this  virus  persists  in  blood  leukocytes  for  life,  and  also 
occurs  in  plasma  during  febrile  episodes.  Symptomatic  horses  are  more  likely  to 
transmit  the  disease  than  animals  with  inapparent  infections;  after  visiting  an 
asymptomatic  carrier,  only  one  out  of  every  6  million  flies  is  likely  to  become  a 
vector. High levels of viremia have also been reported during the early stages of the 
infection in mules. Significantly lower titers have been reported in donkeys inoculated 
with certain horse-adapted strains.  

Although other insects including stable flies (Stomoxys calcitrans) can transmit 

EIAV, the most effective vectors are biting flies in the family Tabanidae, especially 
horse flies  (Tabanus spp. and  Hybomitra spp.) and deer flies (Chrysops spp.). The 
bites of these flies are painful, and the animal’s reaction interrupts feeding. The fly 
attempts  to  resume  feeding  immediately,  either  on  the  same  animal  or  on  another 
nearby  host,  resulting  in  the  transfer  of  infectious  blood.  EIAV  survives  for  a 
limited time on the mouthparts of insects, and it is less likely to be spread to more 
distant  hosts.  This  virus  can  also  be  transmitted  in  blood  transfusions  or  on 
contaminated needles, surgical instruments and teeth floats. It is reported to persist 
for up to 96 hours on hypodermic needles. EIAV may also be passed from a mare to 
her foal in utero.  

Other, minor routes of transmission might be possible. EIAV does not appear to 

be  shed  in  saliva  or  urine.  However,  it  can  be  found  in  milk  and  semen,  and  horses 
can be infected by inoculating these secretions subcutaneously. Possible transmission 
through milk has been reported in some nursing foals. Although venereal transmission 
does not seem to be a major route of spread, one stallion appears to have transmitted 
the  virus  to  a  mare  with  a  vaginal  tear  during  breeding.  The  possibility  of  aerosol 
transmission  by  infectious  material  during  close  contact  was  raised  during  the  2006 
outbreak in Ireland.  

Incubation Period 

The  incubation  period  is  a  week  to  45  days  or  longer.  Some  horses  remain 

asymptomatic until they are stressed. 

 


background image

Equine Infectious Anemia 

Last Updated: August 2009

 

© 2009

 

page 2 of 4 

Clinical Signs 

The  clinical  signs  of  acute  EIA  are  often  nonspecific. 

In  some  cases  in  horses,  the  only  sign  is  a  fever,  which  is 
sometimes  accompanied  by  transient  inappetence.  In  mild 
cases,  the  fever  can  last  less  than  24  hours.  More  severely 
affected  horses  can  become  weak,  depressed  and 
inappetent, with additional signs that may include jaundice, 
tachypnea, 

tachycardia, 

ventral 

pitting 

edema, 

thrombocytopenia,  petechiae  on  the  mucus  membranes, 
epistaxis  or  blood–stained  feces.  Anemia  can  occur, 
although  it  is  more  likely  to  be  severe  in  chronically 
infected  animals.  Occasionally,  horses  become  gravely  ill 
and  may  die  during  the  acute  stage.  After  the  initial  bout, 
most horses become asymptomatic carriers; however, some 
animals develop recurring clinical signs that vary from mild 
illness  and  failure  to  thrive  to  fever,  depression,  petechial 
hemorrhages on the mucus membranes, weight loss, anemia 
and  dependent  edema.  Inapparent  infections  may  become 
symptomatic  during  concurrent  illnesses,  severe  stress  or 
hard  work.  Death  is  possible  during  these  febrile  episodes. 
Ophthalmic  lesions,  characterized  by  depigmentation  with 
prominent  choroidal  vessels,  have  been  reported  in 
chronically infected horses. 

Donkeys  and  mules  are  less  likely  to  develop  severe 

clinical signs. Mules can be infected asymptomatically, but 
typical  EIA  signs  have  been  reported  in  some  naturally  or 
experimentally  infected  animals.  In  a  recent  experiment, 
donkeys  inoculated  with  two  horse-adapted  strains  became 
infected  but  remained  asymptomatic.  Donkeys  inoculated 
with a serially-passaged, donkey-adapted strain in China are 
reported to have developed clinical signs. 

Post Mortem Lesions 

The  spleen,  liver  and  abdominal  lymph  nodes  may  be 

enlarged,  and  the  mucous  membranes  can  be  pale.  In 
chronic  cases,  emaciation  may  also  be  noted.  Edema  is 
often  found  in  the  limbs  and  along  the  ventral  abdominal 
wall.  Petechiae  may  be  observed  on  internal  organs, 
including  the  spleen  and  kidney.  Mucosal  and  visceral 
hemorrhages  and  blood  vessel  thrombosis  have  also  been 
reported.  Chronically  infected  horses  that  die  between 
clinical  episodes  usually  have  no  gross  lesions,  but  some 
animals may have proliferative glomerulonephritis or ocular 
lesions.  

Morbidity and Mortality 

The  infection  rate  varies  with  the  geographic  region. 

Virus transmission is influenced by the number and species 
of flies, their habits, the density of the horse population, the 
level  of  viremia  in  the  host  and  the  quantity  of  blood 
transferred.  Infections  are  particularly  common  in  humid, 
swampy regions. Seroprevalence rates as high as 70% have 
been seen on farms where the disease has been endemic for 
many years. The morbidity rate and severity of the clinical 
signs are influenced by the strain and dose of the virus, and 

the health of the animal. Horses are more likely to develop 
clinical  signs  than  donkeys  or  mules,  but  many  horses  are 
infected  subclinically.  The  presence  of  EIAV  in  a  herd 
often goes unnoticed until some horses develop the chronic 
form  of  the  disease  or  routine  testing  is  done.  Epizootics 
with high morbidity and mortality rates have been reported, 
but  deaths  are  otherwise  uncommon  in  naturally  infected 
horses. Experimental inoculation with a high viral dose can 
result in mortality rates as high as 80%.  

Diagnosis 

Clinical 

Equine  infectious  anemia  should  be  among  the 

differentials  in  individual  horses  with  weight  loss,  edema 
and  intermittent  fever.  It  should  also  be  considered  when 
several 

horses 

experience 

fever, 

anemia, 

edema, 

progressive weakness or weight loss, particularly when new 
animals have been introduced into the herd or a member of 
the herd has died. 

Differential diagnosis 

The  differential  diagnosis  includes  other  febrile 

illnesses 

including 

equine 

viral 

arteritis, 

purpura 

hemorrhagica, leptospirosis, babesiosis, severe strongyliasis 
or 

fascioliasis, 

phenothiazine 

toxicity, 

autoimmune 

hemolytic  anemia  and  other  diseases  that  cause  fever, 
edema and/or anemia. 

Laboratory tests 

Equine  infectious  anemia  is  often  confirmed  by 

serology.  Once  an  animal  is  infected,  it  becomes  a  carrier 
for life. The two most commonly used serological tests are 
the  agar  gel  immunodiffusion  (AGID  or  Coggins)  test  and 
enzyme-linked  immunosorbent  assays  (ELISAs).  Horses 
are usually seronegative in the AGID test during the first 2-
3 weeks after infection; in rare cases, they may not develop 
antibodies  until  60  days.  ELISAs  can  detect  antibodies 
earlier than the AGID test and are more sensitive, but false 
positives are more likely to occur. For this reason, positive 
results  on  ELISA  are  confirmed  with  the  AGID  test  or 
immunoblotting  (Western  blotting).  Limited  experimental 
evidence suggests that antibody production may be delayed 
in donkeys and mules.  

Reverse-transcriptase  polymerase  chain  reaction  (RT-

PCR)  assays  can  also  be  used  to  detect  infected  horses. 
These tests are valuable in determining the infection status 
of foals born to infected mares, because young animals may 
have maternal antibodies up to the age of 6-8 months. PCR 
tests can also be used to supplement or confirm serological 
tests, particularly when there are conflicting results or when 
an  infection  is  suspected  but  serology  is  negative  or 
equivocal  (e.g.,  in  early  cases  where  antibodies  have  not 
developed).  In  addition,  this  technique  can  ensure  that 
blood  donors  and  horses  used  for  vaccine  or  antiserum 
production  are  uninfected.  RT-PCR  appears  to  be  an 
effective method of diagnosis in mules as well as horses. 


background image

Equine Infectious Anemia 

Last Updated: August 2009

 

© 2009

 

page 3 of 4 

Virus isolation is not usually required for a diagnosis, 

but  it  can  be  done.  EIAV  may  be  found  in  both  plasma 
and  blood  leukocytes  during  febrile  episodes;  between 
these  periods,  this  virus  is  cell-associated.  Virus  isolation 
is  performed  in  horse  leukocyte  cultures;  because  these 
cells are difficult to grow, this test may not be available in 
all laboratories. The identity of the virus can be confirmed 
with  antigen-specific  ELISAs,  immunofluorescence  tests 
or PCR.  

If the status of an equid cannot be determined by other 

methods, blood may be inoculated into a susceptible horse. 
Antibody  status  and  clinical  signs  in  the  test  animal  are 
monitored for at least 45 days. 

Samples to collect 

Serum should be collected for serology. Blood samples 

are taken for RT-PCR, virus  isolation or inoculation into a 
test animal.  

Recommended actions if  
equine infectious anemia is suspected 

Notification of authorities 

Equine  infectious  anemia  is  a  reportable  disease  in 

many  states.  Each  state  should  be  checked  for  specific 
regulations.  

Federal: Area Veterinarians in Charge (AVIC): 

http://www.aphis.usda.gov/animal_health/area_offices/

 

State Veterinarians:   

http://www.usaha.org/Portals/6/StateAnimalHealthOfficials
.pdf

 

Control 

Many countries have control programs requiring equids 

to be tested for equine  infectious anemia. State regulations 
in the U.S. vary, but  most states require one or  more tests, 
particularly  before  entry  of  the  horse  into  the  state, 
participation in organized activities and/or sale of the horse. 
Regular voluntary testing of the equids on a farm, as well as 
testing  of  new  animals  before  introduction,  is  helpful  in 
maintaining an EIA-free herd. No vaccine is available. 

Infected equids become lifelong carriers, and must be 

permanently  isolated  from  other  susceptible  animals  or 
euthanized.  In  the  U.S.,  a  reactor  must  be  marked  with  a 
brand,  freezemarking  or  a  lip  tattoo  before  it  is  moved 
between states.  Reactors can only be transported between 
states  if  they  are  going  to  their  home  farms,  a 
slaughterhouse,  or  a  diagnostic  or  research  facility,  and 
they  must  move  under  quarantine  conditions.  Most  states 
also require that reactors be marked if they remain within 
the state. The risk of transmission from carriers varies, but 
because  it  is  impossible  to  quantify  this  risk,  all  infected 
horses are treated alike. Asymptomatic carriers often give 
birth  to  uninfected  foals.  The  risk  of  congenital  infection 
is  higher  if  the  mare  has  clinical  signs  before  she  gives 
birth. Foals born to infected mares should be isolated from 

other  equids  until  the  foal  is  determined  to  be  free  of 
infection. 

During an outbreak, spraying to control insect vectors, 

as  well  as  the  use  of  insect  repellents  and  insect-proof 
stabling,  may  aid  in  interrupting  transmission.  Placing 
animals  in  small  groups  separated  by  at  least  200  yards 
might  be  beneficial  when  the  virus  is  being  transmitted 
within  a  farm.  Care  should  be  taken  to  prevent  iatrogenic 
transmission.  In  countries  where  equine  infectious  anemia 
is not present, outbreaks are contained with quarantines and 
movement  controls,  tracing  of  cases  and  surveillance. 
Enveloped  viruses  such  as  EIAV  are  readily  destroyed  by 
most  common  disinfectants.  This  virus  does  not  persist  in 
insects, which are mechanical vectors. 

Public Health 

There is no evidence that equine infectious anemia is a 

threat to humans. 

Internet Resources 

American Association for Horsemanship Safety (AAHS). 

Your Horse, Equine Infectious Anemia and the Law. 

http://asci.uvm.edu/equine/law/horselaw/eia.htm

  

AAHS. Equine Infectious Anemia Statutes and 

Administrative Regulations for Individual States 

http://asci.uvm.edu/equine/law/eia/eia.htm

  

Food and Agriculture Organization of the United Nations 

(FAO). Manual for the Recognition of Exotic Diseases 
of Livestock  

http://www.spc.int/rahs/

  

The Merck Veterinary Manual 

http://www.merckvetmanual.com/mvm/index.jsp

  

USDA APHIS. Equine Infectious Anemia Disease 

Information 

http://www.aphis.usda.gov/animal_health/animal_disea
ses/eia/

  

World Organization for Animal Health (OIE) 

http://www.oie.int

  

OIE Manual of Diagnostic Tests and Vaccines for  

Terrestrial Animals  

http://www.oie.int/international-standard-
setting/terrestrial-manual/access-online/

 

OIE Terrestrial Animal Health Code 

http://www.oie.int/international-standard-
setting/terrestrial-code/access-online/

 

References 

Brangan P, Bailey DC, Larkin JF, Myers T, More SJ. 

Management of the national programme to eradicate equine 
infectious anaemia from Ireland during 2006: a review. Equine 
Vet J. 2008;40(7):702-4. 


background image

Equine Infectious Anemia 

Last Updated: August 2009

 

© 2009

 

page 4 of 4 

Cook SJ, Cook RF, Montelaro RC, Issel CJ. Differential responses 

of Equus caballus and Equus asinus to infection with two 
pathogenic strains of equine infectious anemia virus.Vet 
Microbiol. 2001;79(2):93-109. 

Dawson RO. Your horse, equine infectious anemia and the law 

[online]. American Association for Horsemanship Safety. 
Available at

http://asci.uvm.edu/equine/law/horselaw/eia.htm

Accessed 3 Jul 2009. 

Garner G, Saville P, Fediaevsky A. Manual for the recognition of 

exotic diseases of livestock: A reference guide for animal 
health staff [online]. Food and Agriculture Organization of the 
United Nations [FAO]; 2003. Equine viral arteritis. Available 
at: 

http://www.spc.int/rahs/

. Accessed 1 Jul 2009. 

Hall FR, Pursell AR, Cole JR, Youmans BC. A propagating 

episode of equine infectious anemia on a horse farm. 
1988;193(9): 1082-1084. 

Issel CJ, Rushlow K, Foil LD, Montelaro RC. A perspective on 

equine infectious anemia with an emphasis on vector 
transmission and genetic analysis. Vet Microbiol. 
1988;17(3):251-86.  

More SJ, Aznar I, Myers T, Leadon DP, Clegg A. An outbreak of 

equine infectious anaemia in Ireland during 2006: the modes 
of transmission and spread in the Kildare cluster. Equine Vet 
J. 2008;40(7):709-11. 

United States Government. Code of Federal Regulations Title 9, 

Chapter I, Subchapter C,  Part 75. Communicable diseases in 
horses, asses, ponies, mules, and zebras. Equine infectious 
anemia (swamp fever). Interstate movement of equine 
infectious anemia reactors and approval of laboratories, 
diagnostic facilities, and research facilities. Available at: 

http://ecfr.gpoaccess.gov/cgi/t/text/text-
idx?c=ecfr&sid=ef347dc0612a15832a2d28710b258ea7&rgn=
div5&view=text&node=9:1.0.1.3.20&idno=9#9:1.0.1.3.20.0.3
8

. Accessed 13 Jul 2009. 

Kahn CM, Line S, editors. The Merck veterinary manual [online]. 

Whitehouse Station, NJ: Merck and Co; 2006. Equine 
infectious anemia. Available at: 

http://www.merckvetmanual.com/mvm/index.jsp?cfile=htm/b
c/52800.htm

Accessed 21 Jun 2009. 

Kemen MJ Jr, Coggins L. Equine infectious anemia: transmission 

from infected mares to foals. J Am Vet Med Assoc. 
1972;161(5):496-9.  

Motie A. An outbreak of suspected equine infectious anaemia in 

Guyana. Br Vet J. 1986;142:36-40  

Murphy FA, Gibbs EPJ, Horzinek MC, Studdert MJ, editors. 

Veterinary virology. San Diego, CA: Academic Press; 1999. 
Equine infectious anemia;. p. 575-576. 

Sellon DC. Equine infectious anemia.Vet Clin North Am Equine 

Pract. 1993;9(2):321-36. 

Spyrou V, Papanastassopoulou M, Psychas V, Billinis Ch, 

Koumbati M, Vlemmas J, Koptopoulos G. Equine infectious 
anemia in mules: virus isolation and pathogenicity studies. Vet 
Microbiol. 2003;95(1-2):49-59. 

Stein CD, Osteen OL, Mott LO, Shahan MS. Experimental 

transmission of equine infectious anemia by contact and body 
secretions and excretions. Vet Med. 1944;39:46-51. 

Stein CD, Mott LO. Studies on congenital transmission of equine 

infectious anemia . Vet Med. 1942;37:37-77. 

Tashjian RJ. Transmission and clinical evaluation of an equine 

infectious anemia herd and their offspring over a 13-year 
period. J Am Vet Med Assoc. 1984;184(3):282-288. 

United States Department of Agriculture. Animal and Plant Health 

Inspection Service, Veterinary Services, Centers for 
Epidemiology and Animal Health [USDA APHIS, VS, 
CEAH]. National Animal Health Monitoring System. Equine 
infectious anemia [online]. USDA APHIS, VS, CEAH; 1996 
Oct. Available at: 
http://www.aphis.usda.gov:80/oa/pubs/fseia.html.*  Accessed 
26 Sept 2001. 

World Organization for Animal Health (OIE). World animal health 

information database (WAHID) [database online]. Equine 
infectious anemia. Paris:OIE;2009. Available at: 

http://www.oie.int/wahis/public.php?page=disease_status_lists

Accessed 20 Jun 2009. 

World Organization for Animal Health (OIE). Manual of 

diagnostic tests and vaccines for terrestrial animals [online]. 
Paris: OIE; 2008. Equine infectious anemia. Available at: 

http://www.oie.int/eng/normes/mmanual/2008/pdf/2.05.06_EI
A.pdf

Accessed 21 Jun 2009. 

 

*Link defunct as of 2009 

 




رفعت المحاضرة من قبل: Yehia Vet
المشاهدات: لقد قام 3 أعضاء و 148 زائراً بقراءة هذه المحاضرة








تسجيل دخول

أو
عبر الحساب الاعتيادي
الرجاء كتابة البريد الالكتروني بشكل صحيح
الرجاء كتابة كلمة المرور
لست عضواً في موقع محاضراتي؟
اضغط هنا للتسجيل